<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">sechenov</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Сеченовский вестник</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Sechenov Medical Journal</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2218-7332</issn><issn pub-type="epub">2658-3348</issn><publisher><publisher-name>Сеченовский Университет</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.47093/2218-7332.2022.13.1.24-33</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">sechenov-453</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ПАТОЛОГИЧЕСКАЯ ФИЗИОЛОГИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>PATHOLOGICAL PHYSIOLOGY</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Прекондиционирование креатин фосфатом уменьшает ишемическо-реперфузионное повреждение изолированного сердца крысы</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Creatine phosphate preconditioning reduces ischemiareperfusion injury in isolated rat heart</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-6862-9791</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Гаджиева</surname><given-names>Л. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Gadjieva</surname><given-names>L. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Гаджиева Луиза Абдурашидовна, соискатель ученой степени канд. мед. наук, врач-терапевт отдела экстренной медицинской помощи</p><p>ул. Пушкина, д. 29а–31, г. Махачкала, 367000</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Louisa A. Gadjieva, applicant for Cand. of Sci. (Medicine), internist, urgent medical aid department</p><p>29а–31, Pushkina str., Makhachkala, 367000</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1574-477X</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Болевич</surname><given-names>С. Б.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Bolevich</surname><given-names>S. B.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Болевич Сергей Бранкович, д-р мед. наук, профессор, заведующий кафедрой патологии человека</p><p>ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2, г. Москва, 119991</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Sergey B. Bolevich, Dr. of Sci. (Medicine), Professor, Head of the Human Pathology Department</p><p>8/2, Trubetskaya str., Moscow, 119991</p></bio><email xlink:type="simple">bolevich2011@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-0071-8376</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Яковлевич</surname><given-names>В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Jakovlevich</surname><given-names>V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Яковлевич Владимир, д-р мед. наук, профессор, декан факультета медицинских наук</p><p>ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2, г. Москва, 119991</p><p>ул. Светозара Марковича, д. 69, Крагуевац, 34000</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Vladimir Jakovljevic, MD, PhD, Professor, Dean of the Faculty of Medical Sciences</p><p>8/2, Trubetskaya str., Moscow, 119991</p><p>69, Svetozar Markovic str., Kragujevac, 34000</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-3"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-0886-8878</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Омаров</surname><given-names>И. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Omarov</surname><given-names>I. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Омаров Исрапил Алисултанович, канд. мед. наук, врач – стоматолог-ортопед</p><p>Смоленская наб., д. 2, корп. 2, г. Москва, 121099</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Israpil A. Omarov, Cand. of Sci. (Medicine), orthopedic dentist, Medical and health center</p><p>2, bld. 2, Smolenskaja quay, Moscow, 121099</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-4"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-4290-2665</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Ордашев</surname><given-names>Х. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Ordashev</surname><given-names>H. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Ордашев Хасан Алиевич, канд. мед. наук, доцент, заведующий кафедрой хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии с усовершенствованием врачей</p><p>пл. Ленина, д. 1, г. Махачкала, 367000</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Hasan A. Ordashev, Cand. of Sci. (Medicine), Associate Professor, Head of the Department of Surgical Dentistry and Maxillofacial Surgery with advanced training for doctors</p><p>1, Lenin Square, Makhachkala, 367000</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-5"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2135-1662</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Карташова</surname><given-names>М. К.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kartashova</surname><given-names>M. K.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Карташова Мария Константиновна, студентка 6-го курса лечебного факультета</p><p>ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2, г. Москва, </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Maria K. Kartashova, 6th year student of Medical Faculty</p><p>8/2, Trubetskaya str., Moscow, 119991</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>ФКУЗ «Медико-санитарная часть Министерства внутренних дел Российской Федерации по Республике Дагестан»</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Medical and Sanitary Unit of the Ministry of Internal Affairs of Russia in the Republic of Dagestan</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University)</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-3"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет&#13;
им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет); Крагуевацкий университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University); University of Kragujevac</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-4"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГЛПУ «Лечебно-оздоровительный центр МИД РФ»</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Health-Related Center of Ministry of External Affairs of Russian Federation</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-5"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБОУ ВО «Дагестанский государственный медицинский университет» Минздрава России</institution><country>Дания</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Dagestan State Medical Univesity</institution><country>Denmark</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2022</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>25</day><month>10</month><year>2021</year></pub-date><volume>13</volume><issue>1</issue><elocation-id>24–33</elocation-id><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Гаджиева Л.А., Болевич С.Б., Яковлевич В., Омаров И.А., Ордашев Х.А., Карташова М.К., 2021</copyright-statement><copyright-year>2021</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Гаджиева Л.А., Болевич С.Б., Яковлевич В., Омаров И.А., Ордашев Х.А., Карташова М.К.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Gadjieva L.A., Bolevich S.B., Jakovlevich V., Omarov I.A., Ordashev H.A., Kartashova M.K.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.sechenovmedj.com/jour/article/view/453">https://www.sechenovmedj.com/jour/article/view/453</self-uri><abstract><p>Цель. Изучить влияние однократного введения креатин фосфата (КФ) непосредственно перед ишемией на кардиодинамические параметры и маркеры окислительного стресса в коронарном венозном оттоке ретроградно перфузированного изолированного сердца крысы.Материалы и методы. 20 крыс линии Wistar albino были разделены на 2 группы: контрольную (К) и экспериментальную (Э), по 10 в каждой. Аорту изолированного сердца крысы канюлировали и ретроградно перфузировали раствором Кребса – Хензелейта по Лангердорфу. Обе группы подвергались ишемическо-реперфузионному повреждению, которое включало глобальную ишемию в течение 20 минут, а затем реперфузию в течение 30 минут. В группе Э проводилось прекондиционирование КФ в дозе 0,2 ммоль/л в течение 5 мин перед ишемией. Регистрировались кардиодинамические параметры и показатели окислительного стресса в точке стабилизации, на 1-й и 30-й минутах реперфузии.Результаты. В группе Э по сравнению с группой К на 30-й минуте реперфузии отмечены статистически значимо более высокие значения кардиодинамических показателей: максимальной и минимальной скорости повышения давления в левом желудочке (в 1,7 и в 1,9 раза соответственно), систолического и диастолического давления в левом желудочке (в 1,5 и в 1,6 раза соответственно). Биомаркеры окислительного стресса (индекс перекисного окисления липидов, нитриты, супероксидный анион радикал и перекись водорода) также были статистически значимо ниже в группе Э как после 1-й минуты реперфузии (в 1,2, 1,4, 2,8 и 1,9 раза соответственно), так и после 30-й минуты (в 1,3, 2,1, 1,9 и 2,1 раза соответственно).Заключение. Введение КФ в коронарный кровоток за 5 минут до индукции ишемии оказывает защитное действие на сократительную способность миокарда. В качестве механизма протективного действия КФ может рассматриваться уменьшение окислительного стресса и повреждения.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Aim. To study the effect of simultaneous administration of creatine phosphate immediately before ischemia on cardiodynamic parameters and biomarkers of oxidative stress in the coronary venous blood flow during retrograde perfusion in an isolated rat heart.Materials and methods. 20 Wistar albino rats were divided into 2 groups: group 1 (control) and group 2 (experimental), 10 rats per group. Cannulation and retrograde perfusion of aorta of an isolated rat heart with Krebs–Henseleit buffered solution by Landendorff was performed. Both groups underwent ischemia-reperfusion injury, which included global ischemia for 20 minutes followed by reperfusion for 30 minutes. The group 2 (experimental) was preconditioned with creatine phosphate at a dose of 0.2 mmol/l for 5 min before ischemia. We registered cardiodynamic parameters and indicators of oxidative stress at the point of stabilization, at the 1st and 30th minutes of reperfusion.Results. With the impact of creatine phosphate at the 30th minute of reperfusion in the group 2 in comparison with group 1, there was found an increase in the maximum and minimum speed of pressure elevation in the left ventricle (1.7 and 1.9 times, respectively), and of systolic and diastolic pressure in the left ventricle (1.5 and 1.6 times, respectively). Biomarkers of oxidative stress (lipid peroxidation index, nitrites, superoxide anion radical and hydrogen peroxide) were also statistically significantly lower in the group 2 after the 1st minute of reperfusion (by 1.2 times, by 1.4 times, by 2.8 times and 1.9 times, respectively), and after the 30th minute (1.3 times, 2.1 times, 1.9 times and 2.1 times, respectively).Conclusion. The administration of creatine phosphate into the coronary flow 5 minutes before the onset of ischemia has a protective effect on myocardial contractility. Reduction of oxidative stress and damage can be considered as a protective effect of creatine phosphate.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>креатин фосфат</kwd><kwd>прекондиционирование</kwd><kwd>ишемия / реперфузионное повреждение</kwd><kwd>окислительный стресс</kwd><kwd>кардиодинамика</kwd><kwd>изолированное крысиное сердце</kwd><kwd>техника Лангендорфа</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>creatine phosphate</kwd><kwd>preconditioning</kwd><kwd>ischemia/reperfusion injury</kwd><kwd>oxidative stress</kwd><kwd>cardiodynamics</kwd><kwd>isolated rat heart</kwd><kwd>Langendorff technique</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>Ишемия миокарда подразумевает снижение снабжения сердца кислородом, что может вызвать ряд функциональных, биохимических и морфологических изменений. В результате ишемии наблюдаются снижение сократительной способности миокарда, развитие систолической и диастолической дисфункции, аритмий [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>].</p><p>При ишемическо-реперфузионном повреждении значительный вклад в развитие сердечной дисфункции вносит повышение уровня окислительного стресса за счет резкого увеличения образования прооксидантов, которые вызывают свободнорадикальное повреждение. Последнее также может влиять на воспаление и, следовательно, еще больше усугублять повреждение миокарда [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>].</p><p>Термин «ишемическое прекондиционирование» был впервые введен в 1986 году и относится к стратегии воздействия на сердце кратковременных эпизодов ишемии с целью повышения толерантности миокарда к прекращению кровоснабжения и доставки кислорода [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. Считается, что в основе прекондиционирования лежат два кардиопротективных механизма: первый, который проявляется в течение первых 2–3 часов после эпизода ишемии, и второй, который начинается через 12–24 часа и длится около 4 дней, защищая миокард от инфаркта, сердечной недостаточности и желудочковых аритмий, вызванных ишемией и реперфузией, за счет улучшения сократительной способности миокарда, а также уменьшения накопления и адгезии нейтрофилов и предотвращения апоптоза миоцитов [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. Однако, учитывая, что клиническое применение ишемического прекондиционирования ограничено, все большее внимание ученых сосредоточено на применении безопасных фармакологических веществ, которые будут вводиться до ишемии и которые бы, подобно ишемическому прекондиционированию, достигали кардиопротекции [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Имеющиеся литературные данные указывают на то, что большое количество веществ может имитировать процессы, вызванные ишемическим прекондиционированием, и в связи с этим может использоваться для фармакологического прекондиционирования [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>].</p><p>Учитывая, что креатин фосфат (КФ) является первой молекулой, потребляемой при ишемии, гипоксии и токсической кардиомиопатии, и что в условиях гипоксии поглощение экзогенно вводимого КФ увеличивается [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>], возникает вопрос, будет ли однократное введение этого вещества защищать миокард от повреждения. Именно поэтому целью данного исследования было изучение влияния однократного введения КФ непосредственно перед ишемией на кардиодинамические параметры и параметры окислительного стресса в коронарном венозном оттоке ретроградно перфузированного изолированного сердца крысы.</p><sec><title>МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ</title><p>Данное экспериментальное исследование проводилось на животных в условиях ex vivo. При экспериментальной работе соблюдались положения «EU Directive for the Protection of the Vertebrate Animals used for Experimental and other Scientific Purposes 86/609 / EES» и принципы этики1. Исследование было одобрено Комитетом по защите благополучия лабораторных животных факультета медицинских наук Крагуевацкого университета, решение № 015722 от 15.07.2020.</p><p>Для исследования влияния КФ на ишемическореперфузионное повреждение сердца использовали 20 здоровых крыс Wistar albino coja мужского пола в возрасте 8 недель, массой тела 200–250 г. Крыс содержали в полипропиленовых клетках, заполненных слоем белой сосновой стружки, в постоянно контролируемой среде (температура (22 ± 1 °C), влажность (55 ± 10%), 12/12-часовой цикл свет/темнота) в Институте сердечно-сосудистой физиологии факультета медицинских наук, Крагуевацкий университет, Сербия. Все животные имели свободный доступ к пище и воде – ad libitum.</p><p>После анестезии кетамином (10 мг/кг) и ксилазином (5 мг/кг) животных выводили из эксперимента путем смещения шейных позвонков (Приложение 1 к животным / научным процедурам, Закон 1986 г., Великобритания). Исследование функции сердца ex vivo проводилось с использованием модели ретроградной перфузии изолированного сердца по Лангендорфу (Langendorff apparatus, Experimetria Ltd, 1062 Budapest, Hungary). Методика исследования подробно описана в наших предыдущих исследованиях [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>].</p><p>После 20-минутного периода стабилизации 10 сердец, которые были отнесены к контрольной группе, подвергались ишемическо-реперфузионному повреждению, которое включало глобальную ишемию путем полного закрытия потока на аппарате Лангендорфа, так что как раствор Кребса – Хенселейта, так и кислород не достигали сердца в течение 20 минут, а затем в течение 30 минут проводилась реперфузия. Другие 10 сердец, которые были отнесены к экспериментальной группе, подвергались стабилизации в течение 20 мин, прекондиционированию КФ в дозе 0,2 ммоль/л в течение 5 минут с помощью инфузионного насоса через сердце, после чего вызывалось ишемическо-реперфузионное повреждение по способу, аналогичному для контрольной группы (рис.).</p><fig id="fig-1"><caption><p>РИС. Схема исследования.FIG. Scheme of the study.</p><p>Примечание: КФ – креатин фосфат.Note: CP – creatine phosphate.</p></caption><graphic xlink:href="sechenov-13-1-g001.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/sechenov/2022/1/BqjJPl0mwTzE1wJ4axkF7qk70PVs1xO25ukqgZnu.jpeg</uri></graphic></fig><p>Существует очень мало исследований, изучавших влияние введения КФ непосредственно в сердце. В исследованиях по изучению системных эффектов КФ доза для крыс составляет обычно около 200 мг/кг. В одном из недавно опубликованных исследований внутривенно вводили КФ в дозе 20 ммоль [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>]. В нашем исследовании выбрана в 100 раз меньшая доза, учитывая непосредственное введение КФ в коронарный кровоток.</p><p>Во время эксперимента наблюдались и регистрировались следующие кардиодинамические параметры: dp/dt max (максимальная скорость развития давления в левом желудочке, мм рт. ст./с), dp/dt min (минимальная скорость развития давления в левом желудочке, мм рт. ст./с), систолическое давление в левом желудочке (СДЛЖ, мм рт. ст.), диастолическое давление в левом желудочке (ДДЛЖ, мм рт. ст.) и частота сердечных сокращений (ЧСС, уд./мин). Кровоток через коронарные кровеносные сосуды выражался в мл/мин и измерялся флуориметрическим методом путем суммирования венозного оттока из коронарных кровеносных сосудов сердца.</p><p>Для изучения влияния КФ на выработку прооксидантов в сердце в образцах коронарного венозного оттока спектрофотометрическим методом на спектрофотометре Shimadzu UV-1800 (Specord S-600 Analytik Jena, Германия) определяли: концентрацию нитритов (NO2–), супероксидного анион-радикала (O2–) и перекиси водорода (H2O2), рассчитывали индекс перекисного окисления липидов (ИПОЛ). Основа для использования этих методик и сами методики описаны нами более подробно в предыдущей публикации [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>].</p></sec><sec><title>Статистический анализ</title><p>Во время экспериментального протокола изученные параметры определялись во время стабилизации, а также на 1-й и 30-й минутах реперфузии. Все полученные результаты для групп представлены в виде долей, выраженных в процентах со стандартным отклонением, относительно данных последней минуты точки стабилизации соответствующей группы, которая принималась за 100%. Для сравнения значений между указанными точками использовали критерий Вилкоксона. При проверке нулевых гипотез принят уровень значимости р &lt; 0,05.</p></sec><sec><title>РЕЗУЛЬТАТЫ</title></sec><sec><title>Кардиодинамические параметры и коронарный кровоток</title><p>Полученные результаты представлены в таблице 1.</p><table-wrap id="table-1"><caption><p>Таблица 1. Кардиодинамические параметры в контрольной и экспериментальной группах во время реперфузииTable 1. Cardiodynamic parameters in the control and experimental groups during the reperfusion</p><p>Примечание: данные представлены как процент от последней минуты точки стабилизации соответствующей группы (%С); dp/dt max – максимальная скорость повышения давления в левом желудочке; dp/dt min – минимальная скорость повышения давления в левом желудочке; ДДЛЖ – диастолическое давление в левом желудочке, мм рт. ст.; СДЛЖ – систолическое давление в левом желудочке; ЧСС – частота сердечных сокращений; n.s. – не значимо.</p><p>Note: the data is presented as a percentage of the last minute stabilization point of the corresponding group (%C); dp/dt max – the maximum rate of pressure increase in the left ventricle; dp/dt min – the minimum rate of pressure increase in the left ventricle; DPLV – diastolic pressure in the left ventricle, mmHg; SPLV – systolic pressure in the left ventricle; HR – heart rate; n.s.– not significant.</p></caption><table><tbody><tr><td>Показатель / Indicator</td><td>1-я минута реперфузии / 1st minute of reperfusion</td><td>30-я минута реперфузии / 30th minute of reperfusion</td></tr><tr><td>Контрольная группа / Control group</td><td>Экспериментальная группа / Experimental group</td><td>Уровень значимости р / p value</td><td>Контрольная группа / Control group</td><td>Экспериментальная группа / Experimental group</td><td>Уровень значимости р / p value</td></tr><tr><td>dp/dt max(%С)</td><td>91,5 ± 9,0</td><td>121,9 ± 14,0</td><td>&lt;0,01</td><td>55,4 ± 6,0</td><td>93,2 ± 9,0</td><td>&lt;0,01</td></tr><tr><td>dp/dt min(%С)</td><td>75,9 ± 8,0</td><td>64,7 ± 8,0</td><td>n.s.</td><td>40,9 ± 5,0</td><td>76,5 ± 8,0</td><td>&lt;0,01</td></tr><tr><td>СДЛЖ / DPLV (%С)</td><td>86,6 ± 9,0</td><td>124,5 ± 13,0</td><td>&lt;0,01</td><td>49,6 ± 5,0</td><td>74,8 ± 7,0</td><td>&lt;0,05</td></tr><tr><td>ДДЛЖ / DPLV (%С)</td><td>188,3 ± 20,0</td><td>120,8 ± 11,0</td><td>&lt;0,01</td><td>49,4 ± 6,0</td><td>77,0 ± 8,0</td><td>&lt;0,05</td></tr><tr><td>ЧСС / HR(%С)</td><td>85,8 ± 7,0</td><td>86,8 ± 9,0</td><td>n.s.</td><td>71,6 ± 7,0</td><td>65,1 ± 7,0</td><td>n.s.</td></tr><tr><td>Коронарный кровоток / Coronary flow (%С)</td><td>97,3 ± 10,0</td><td>99,8 ± 10,0</td><td>n.s.</td><td>63,0 ± 7,0</td><td>63,0 ± 6,0</td><td>n.s.</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>В контрольной группе, начиная с 1-й минуты реперфузии, уменьшались: dp/dt max, dp/dt min, СДЛЖ, к 30-й минуте эти параметры продолжали снижаться; ДДЛЖ увеличивалось в 1,9 раза во время 1-й минуты реперфузии и снижалось в 2 раза по сравнению с периодом стабилизации к 30-й минуте.</p><p>В экспериментальной группе с 1-й минуты реперфузии отмечено уменьшение dp/dt min, которая имела тенденцию к повышению к 30-й минуте. Другие кардиодинамические показатели – dp/dt max иСДЛЖ – повышались на 1-й минуте реперфузии и снижались к 30-й минуте. ДДЛЖ увеличивалось в 1,2 раза во время 1-й минуты реперфузии и снижалось в 1,3 раза к 30-й минуте по сравнению с периодом стабилизации.</p><p>Динамика коронарного кровотока и ЧСС была аналогичной в обеих группах: ЧСС начинала снижаться на 1-й минуте, и показатели достигали минимума к 30-й минуте; коронарный кровоток существенно неизменялся на 1-й минуте и снижался к 30-й минуте.</p><p>Значения обоих параметров, отражающих сократительную способность миокарда (dp/dt max и dp/dt min), через 30 минут от периода реперфузии были статистически значимо выше, чем значения, зарегистрированные в контрольной группе, в 1,7 и в 1,9 раза соответственно. Вместе с этим изменение значений СДЛЖ по сравнению со значениями, зарегистрированными в точке стабилизации, было статистически значимо выше и на 1-й, и на 30-й минутах реперфузии по сравнению с контрольной группой в 1,4 и в 1,5 раза соответственно. Одновременно на первой минуте реперфузии значения ДДЛЖ были статистически значимо ниже (в 1,6 раза) в экспериментальной, чем в контрольной группе. В контрольной группе наблюдалось выраженное снижение значений ДДЛЖ, так что в конце реперфузии оно было ниже в 1,6 раза, чем в экспериментальной группе.</p></sec><sec><title>Параметры окислительного стресса</title><p>Значения параметров окислительного стресса представлены в таблице 2.</p><table-wrap id="table-2"><caption><p>Таблица 2. Параметры окислительного стресса в контрольной и экспериментальной группах во время реперфузииTable 2. Oxidative stress parameters in the control and experimental groups</p><p>Примечание: данные представлены как процент от последней минуты точки стабилизации соответствующей группы (%С); NO2– – нитриты; O2– – супероксидный анион-радикал; ИПОЛ – индекс перекисного окисления липидов; Н2O2 – перекись водорода.Note: the data is presented as a percentage of the last minute stabilization point of the corresponding group (%C); NO2– – nitrites; O2– – superoxide anion-radical; POLI – lipid peroxidation index; Н2O2 – hydrogen peroxide.</p></caption><table><tbody><tr><td>Показатель / Indicator</td><td>1-я минута реперфузии / 1st minute of reperfusion</td><td>30-я минута реперфузии / 30th minute of reperfusion</td></tr><tr><td>Контрольная группа / Control group</td><td>Экспериментальная группа / Experimental group</td><td>Уровень значимости р / p value</td><td>Контрольная группа / Control group</td><td>Экспериментальная группа / Experimental group</td><td>Уровень значимости р / p value</td></tr><tr><td>ИПОЛ / LPI(%С)</td><td>112,3 ± 12,0</td><td>96,4 ± 10,0</td><td>&lt;0,05</td><td>113,9 ± 12,0</td><td>90,7 ± 9,0</td><td>&lt;0,01</td></tr><tr><td>NO2– (%С)</td><td>127,7 ± 13,0</td><td>93,1 ± 9,0</td><td>&lt;0,01</td><td>154,0 ± 16,0</td><td>75,1 ± 8,0</td><td>&lt;0,01</td></tr><tr><td>O2– (%С)</td><td>163,0 ± 15,0</td><td>57,8 ± 6,0</td><td>&lt;0,01</td><td>215,2 ± 23,0</td><td>112,9 ± 12,0</td><td>&lt;0,01</td></tr><tr><td>H2O2 (%С)</td><td>162,1 ± 17,0</td><td>84,0 ± 9,0</td><td>&lt;0,01</td><td>181,4 ± 19,0</td><td>87,2 ± 8,0</td><td>&lt;0,01</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>В контрольной группе на 1-й минуте реперфузии происходило повышение концентрации параметров окислительного стресса, к 30-й минуте концентрация трех из них (NO2–, O2– и Н2O2) продолжала увеличиваться. В экспериментальной группе на 1-й минуте реперфузии отмечено снижение O2– и Н2O2 и отсутствие выраженных изменений NO2– и ИПОЛ. К 30-й минуте в этой группе продолжилось снижение NO2–, концентрация Н2O2 и ИПОЛ существенно не изменились, содержание O2– повысилось, но существенно не превышало значений в точке стабилизации.</p><p>Значения ИПОЛ, NO2–, O2– и Н2O2 были статистически значимо ниже в период реперфузии в экспериментальной группе по сравнению со значениями, зарегистрированными в контрольной группе как после 1-й минуты (в 1,2, 1,4, 2,8 и 1,9 раза соответственно), так и после 30-й минуты (в 1,3, 2,1, 1,9 и 2,1 раза соответственно).</p></sec><sec><title>ОБСУЖДЕНИЕ</title><p>Наши результаты выявили, что в контрольной группе кардиодинамические параметры – dp/dt max, dp/dt min, СДЛЖ и ЧСС – снижались во время реперфузии на 1-й и 30-й минутах по сравнению с периодом стабилизации, а ДДЛЖ значительно увеличивалось на 1-й минуте, а затем снижалось, что указывает на нарушение инотропной и лузитропной способности миокарда. Снижение СДЛЖ подтверждает, что ишемическо-реперфузионное повреждение нарушает систолическую функцию сердца. Уменьшение ЧСС и коронарного кровотока в последнюю минуту реперфузии подтверждает, что восстановление снабжения питательными веществами и кислородом ишемизированного миокарда парадоксально ухудшает функцию сердца. В литературе описано, что в период восстановления перфузии через ишемическую ткань происходит перегрузка Са2+, накопление внеклеточного K+, что синергетически ухудшает сократительную способность миокарда [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>].
</p><p>Введение КФ в дозе 0,2 ммоль/л непосредственно перед началом ишемии сопровождалось увеличением значений dp/dt max и снижением dp/dt min по сравнению с периодом стабилизации. Менее выраженные изменения параметров сердечной функции указывают на значительную роль КФ в процессе прекондиционирования сердца. Положительное влияние КФ на диастолическую функцию сердца чрезвычайно важно, потому что фаза релаксации определяет наполнение сердца и, в конечном итоге, его работу.</p><p>Кардиопротекторные эффекты КФ, продемонстрированные в нашем исследовании, согласуются с предыдущими исследованиями. В частности, ранее на модели кроликов и свиней наблюдалось влияние КФна сердца, подвергшиеся ишемии. Было отмечено, что введение указанного агента приводит к значительному уменьшению области некроза сердца и защите сарколеммы от необратимого повреждения [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>]. Кроме того, когда КФ вводили за 5 минут до ишемии в дозе до 200 мг/кг, наблюдалось значительное снижение повреждения миокарда [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>].</p><p>Другая группа авторов показала, что парентеральное введение КФ незадолго до ишемии миокарда вызывало лучший сократительный ответ миокарда и сохраняло уровень аденозинтрифосфата (АТФ) по сравнению с сердцами крыс, получавших физиологический раствор [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Кроме того, было показано, что прекондиционирование сердца КФ сохраняет запасы КФ и АТФ. Однако существенным недостатком данного исследования является то, что оно не отслеживало сократительную функцию сердца.</p><p>Кроме того, авторы исследования, которое отслеживало эффекты однократной дозы КФ (100 мг/кг, внутривенно), вводимой за 1 час до ишемии сердца, также подчеркивают кардиозащитный потенциал исследуемого соединения. В частности, ишемия сердца на животной модели была вызвана в течение 12-минутного периода перевязки левой передней нисходящей артерии, и из образцов миокарда были определены уровни следующих соединений: АТФ, аденозиндифосфат, фосфокреатин. Как и ожидалось, снижение АТФ наблюдалось в интактных сердцах, подвергшихся ишемии, тогда как в группе животных, получавших КФ, наблюдалось увеличение его концентрации в ткани сердца [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>].
Считается, что ключевым патофизиологическим фактором, принимающим участие в прогрессировании ишемическо-реперфузионного повреждения, является увеличение уровня Ca2+ в результате его перехода из цитозоля в сакроплазматический ретикулум посредством SERCA2a (Ca2+-АТФаза саркоплазматического ретикулума). Снижение экспрессии и активности SERCA2a, которые были подтвержденыво время ишемическо-реперфузионного повреждения изолированного сердца крысы, дополнительно влияют на Са2+ перегрузку и могут объяснить нарушенную систолическую и диастолическую функцию сердца крысы в контрольной группе. Из-за открытия митохондриальных каналов может произойти гибель клеток. Было показано, что КФ может ингибировать открытие митохондриальных каналов и таким образом предотвращать перегрузку Са2+ в кардиомиоцитах, что может объяснить сохранение сократимости сердца в нашем исследовании. Потенциал КФ влиять на сократительную способность сердца наблюдался как на животных моделях, так и при наблюдении за пациентами с инфарктом миокарда. Способность КФ обеспечивать полное расслабление сердца важна для предотвращения возникновения реперфузионной контрактуры [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>].
</p><p>Механизмы, которые могут объяснить наблюдаемые защитные эффекты в нашем исследовании, включают участие КФ в энергетическом метаболизме клетки, влияние на стабилизацию мембраны имикроциркуляцию. КФ стабилизирует мембрану кардиомиоцитов, взаимодействуя с мембранными фосфолипидами, связывая противоположно заряженную группу с заряженной группой фосфолипидов. Благоприятное влияние КФ на микроциркуляцию объясняется тенденцией ингибировать агрегацию тромбоцитов путем быстрого удаления аденозиндифосфата [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]. Кроме того, экзогенное введение КФ может уменьшить накопление лизофосфатидилхолина и лизофосфатилэтаноламина в ишемической клетке сердца. Таким образом, значительно снижается и предотвращается возникновение потенциально смертельных аритмий [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>].</p><p>В нашем исследовании в контрольной группе наблюдался значительный скачок концентрации H2O2, O2– и NО2– в период реперфузии по сравнению со значениями в периоде стабилизации. Прекондиционирование КФ предотвращало увеличение измеряемых прооксидантов, тем самым защищая сердце от окислительного ишемическо-реперфузионного повреждения. В литературе сообщается, чтопосле воздействия ишемии на сердце и последующей реперфузии в кардиомиоцитах образуются O2–, тогда как в сосудистом русле – O2– и H2O2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>В нашем исследовании основное внимание было уделено мониторингу уровней прооксидантов из коронарного венозного оттока без учета антиоксидантных маркеров, которые изучались, в частности, в исследовании A. Shopit и соавт. [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>], посвященном изучению влияния КФ на окислительный статус через определение уровней малонового диальдегида, глутатиона, супероксиддисмутазы in vitro и in vivo. Авторами отмечено, что введение КФ вызывает значительное снижение уровня малонового диальдегида и увеличение глутатиона и супероксиддисмутазы. Считается, что КФ увеличивает антиоксидантную способность миокарда и воздействует на сигнальные пути ядерного фактора транскрипции Nrf2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. Следует иметь в виду, что обнаружение меньших количеств антиоксидантов также не обязательно означает,что произошло окислительное повреждение, но может указывать на то, что антиоксиданты удаляли прооксиданты и предотвращали повреждение тканей.</p><p>Роль эндогенного оксида азота (NO) в ишемическо-реперфузионном повреждении противоречива, и трудно объяснить, где граница между защитными и потенциально вредными эффектами. В частности, снижение биоиспользования NO может поставить под угрозу процесс расслабления артерий и изменить функцию эндотелия. Снижение концентрации NO2– в качестве косвенного маркера NO в нашем исследовании под влиянием КФ указывает на вклад этого соединения в улучшение эндотелиальной функции [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>]. Результаты подтверждают, что активация эндотелиальной синтазы NO в ишемическо-реперфузионном повреждении приводит к увеличению синтеза и высвобождению NO в условиях пониженной концентрации прооксидантов. С другой стороны, когда присутствуют высокие концентрации активных форм кислорода, избыточное количество NO будет реагировать с O2– и образовывать токсичный радикал пероксинитрита (ONOO–), который усугубляет сердечную дисфункцию [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].</p><p>На настоящий момент в стратегии прекондиционирования окислительно-восстановительная передача сигналов еще недостаточно исследована и остается предметом изучения будущих исследований. Тем не менее было подтверждено, что временные низкие концентрации прооксидантов могут запускать механизмы защиты сердца и что передача сигналов активных форм кислорода во время прекондиционированияи во время фазы ранней реперфузии делает сердце устойчивым к реперфузионному повреждению [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>]. До сих пор не было точно объяснено, может ли фармакологическое прекондиционирование помочь избежать массового производства активных форм кислорода и открытия митохондриальных каналов или просто смягчить эти процессы. Ранее описанное влияние КФ на митохондриальные каналы, вероятно, также отражается на окислительно-восстановительном статусе сердца, наблюдаемом в нашем исследовании.</p><p>Результаты исследований свидетельствуют о защитном эффекте введения КФ в коронарное русло непосредственно перед ишемией. Проведенное исследование имеет потенциальное практическое применение у пациентов, которым необходимо провести процедуру, вызывающую ишемию с последующей реперфузией миокарда. Что касается исследовательской модели, было бы интересно и, таким образом, ближе креальной ситуации, применить КФ на коронарных сосудах, а затем вызвать инфаркт или кардиоплегию in vivo. Принимая во внимание, что исследование проводилось на животной модели, возможны трансляционные исследования пациентов, перенесших операцию на сердце.</p></sec><sec><title>ВЫВОДЫ</title><p>Введение КФ в коронарный кровоток за 5 минут до индукции ишемии оказывает защитное действие на сократительную способность миокарда в модели изолированного сердца крысы; протективное действие в отношении сохранения показателей СДЛЖ и ДДЛЖ на значениях, более близких к исходным показателям, по сравнению с контрольной группой. Одним из механизмов защитного действия КФ может рассматриваться уменьшение окислительного стресса и окислительного повреждения.</p></sec><sec><title>ВКЛАД АВТОРОВ</title><p>Л.А. Гаджиева внесла значительный вклад в разработку концепции идеи, проведение исследования и обработку данных, подготовку рукописи. С.Б. Болевич внес основной вклад в разработку концепции идеи и методологии проведения эксперимента, а также написание текста статьи, окончательно утвердил публикуемую версию статьи и согласен принять на себя ответственность за все аспекты работы. В. Яковлевич внес основной вклад в разработку концепции идеи и методологии проведения эксперимента. И.А. Омаров проводил статистическую обработку результатов исследования и участвовал в разработке методологии проведения исследования и редактировании текста статьи. Х.А. Ордашев и М.К. Карташова участвовали в обработке данных и редактировании текста статьи. Все авторы утвердили окончательную версию статьи.</p><p>Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.</p><p>Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки (собственные ресурсы).</p><p>1. https://ec.europa.eu/environment/chemicals/lab_animals/legislation_en.htm (дата обращения: 08.06.2020).
</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Valikeserlis I., Athanasiou A.A., Stakos D. Cellular mechanisms and pathways in myocardial reperfusion injury. Coron Artery Dis. 2021 Sep 1; 32(6): 567–577. https://doi.org/10.1097/MCA.0000000000000997. PMID: 33471478</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Valikeserlis I., Athanasiou A.A., Stakos D. Cellular mechanisms and pathways in myocardial reperfusion injury. Coron Artery Dis. 2021 Sep 1; 32(6): 567–577. https://doi.org/10.1097/MCA.0000000000000997. PMID: 33471478</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">DePasquale E.C., Ardehali A. Primary graft dysfunction in heart transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 2018; 23(3): 286–294. https://doi.org/10.1097/MOT.0000000000000523</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">DePasquale E.C., Ardehali A. Primary graft dysfunction in heart transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 2018; 23(3): 286–294. https://doi.org/10.1097/MOT.0000000000000523</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cai W.B., Zhao Y.J., Liu L., et al. Redox environment metabolomic evaluation (REME) of the heart after myocardial ischemia/ reperfusion injury. Free Radic Biol Med. 2021 Sep; 173: 7–18. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2021.06.033. Epub 2021 Jul 9. PMID: 34252540</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cai W.B., Zhao Y.J., Liu L., et al. Redox environment metabolomic evaluation (REME) of the heart after myocardial ischemia/reperfusion injury. Free Radic Biol Med. 2021 Sep; 173: 7–18. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2021.06.033. Epub 2021 Jul 9. PMID: 34252540</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lu C., Liu L., Chen S., et al. Azathioprine pretreatment ameliorates myocardial ischaemia reperfusion injury in diabetic rats by reducing oxidative stress, apoptosis, and inflammation. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2021 Dec; 48(12): 1621–1632. https://doi.org/10.1111/1440-1681.13569. Epub 2021 Aug 22. PMID: 34370882</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lu C., Liu L., Chen S., et al. Azathioprine pretreatment ameliorates myocardial ischaemia reperfusion injury in diabetic rats by reducing oxidative stress, apoptosis, and inflammation. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2021 Dec; 48(12): 1621–1632. https:// doi.org/10.1111/1440-1681.13569. Epub 2021 Aug 22. PMID: 34370882</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Murry C.E., Jennings R.B., Reimer K.A. Preconditioning with ischemia: a delay of lethal cell injury in ischemic myocardium. Circulation. 1986 Nov; 74(5): 1124–1136. https://doi.org/10.1161/01.cir.74.5.1124. PMID: 3769170</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Murry C.E., Jennings R.B., Reimer K.A. Preconditioning with ischemia: a delay of lethal cell injury in ischemic myocardium. Circulation. 1986 Nov; 74(5): 1124–1136. https://doi.org/10.1161/01.cir.74.5.1124. PMID: 3769170</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Granfeldt A., Lefer D.J., Vinten-Johansen J. Protective ischaemia in patients: preconditioning and postconditioning. Cardiovasc Res. 2009 Jul 15; 83(2): 234–246. https://doi.org/10.1093/cvr/cvp129. Epub 2009 Apr 27. PMID: 19398470</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Granfeldt A., Lefer D.J., Vinten-Johansen J. Protective ischaemia in patients: preconditioning and postconditioning. Cardiovasc Res. 2009 Jul 15; 83(2): 234–246. https://doi.org/10.1093/cvr/cvp129. Epub 2009 Apr 27. PMID: 19398470</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Caricati-Neto A., Errante P.R., Menezes-Rodrigues F.S. Recent advances in pharmacological and non-pharmacological strategies of cardioprotection. Int J Mol Sci. 2019 Aug 16; 20(16): 4002. https://doi.org/10.3390/ijms20164002. PMID: 31426434</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Caricati-Neto A., Errante P.R., Menezes-Rodrigues F.S. Recent advances in pharmacological and non-pharmacological strategies of cardioprotection. Int J Mol Sci. 2019 Aug 16; 20(16): 4002. https://doi.org/10.3390/ijms20164002. PMID: 31426434</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Roth S., Torregroza C., Feige K., et al. Pharmacological conditioning of the heart: an update on experimental developments and clinical implications. Int J Mol Sci. 2021 Mar 3; 22(5): 2519. https://doi.org/10.3390/ijms22052519. PMID: 33802308; PMCID: PMC7959135</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Roth S., Torregroza C., Feige K., et al. Pharmacological conditioning of the heart: an update on experimental developments and clinical implications. Int J Mol Sci. 2021 Mar 3; 22(5): 2519. https://doi.org/10.3390/ijms22052519. PMID: 33802308; PMCID: PMC7959135</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gaddi A.V., Galuppo P., Yang J. Creatine phosphate administration in cell energy impairment conditions: A summary of past and present research. Heart Lung Circ. 2017 Oct; 26(10): 1026–1035. https://doi.org/10.1016/j.hlc.2016.12.020. Epub 2017 Mar 14. PMID: 28392102</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gaddi A.V., Galuppo P., Yang J. Creatine phosphate administration in cell energy impairment conditions: A summary of past and present research. Heart Lung Circ. 2017 Oct; 26(10): 1026–1035. https://doi.org/10.1016/j.hlc.2016.12.020. Epub 2017 Mar 14. PMID: 28392102</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Говорушкина Н.С., Болевич С.Б., Яковлевич В. и др. Влияние соединения MK-801, глутамата и глицина через модуляцию N-метил-D-аспартатных рецепторов на изолированное сердце крысы. Сеченовский вестник. 2020; 11(1): 15–25. https://doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.15-25</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Govorushkina N.S., Bolevich S.B., Jakovlevich V., et al. Vliyanie soedineniya MK-801, glutamata i glitsina cherez modulyatsiyu N-metil-D-aspartatnykh retseptorov na izolirovannoe serdtse krysy [The influence of MK-801, glutamate and glycine via the modulation of N-methyl-D-aspartate receptors on isolated rat heart]. Sechenov Medical Journal. 2020; 11(1): 15–25. https://doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.15-2</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Qaed E., Wang J., Almoiliqy M., et al. Phosphocreatine improves cardiac dysfunction by normalizing mitochondrial respiratory function through JAK2/STAT3 signaling pathway in vivo and in vitro. Oxid Med Cell Longev. 2019 Nov 30; 2019: 6521218. https://doi.org/10.1155/2019/6521218. PMID: 31885809</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Qaed E., Wang J., Almoiliqy M., et al. Phosphocreatine improves cardiac dysfunction by normalizing mitochondrial respiratory function through JAK2/STAT3 signaling pathway in vivo and in vitro. Oxid Med Cell Longev. 2019 Nov 30; 2019: 6521218. https://doi.org/10.1155/2019/6521218. PMID: 31885809</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kalogeris T., Baines C.P., Krenz M., Korthuis R.J. Cell biology of ischemia/reperfusion injury. Int Rev Cell Mol Biol. 2012; 298: 229–317. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-394309-5.00006-7. PMID: 22878108</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kalogeris T., Baines C.P., Krenz M., Korthuis R.J. Cell biology of ischemia/reperfusion injury. Int Rev Cell Mol Biol. 2012; 298: 229–317. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-394309-5.00006-7. PMID: 22878108</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sharov V.G., Afonskaya N.I., Ruda M.Y., et al. Protection of ischemic myocardium by exogenous phosphocreatine (neoton): pharmacokinetics of phosphocreatine, reduction of infarct size, stabilization of sarcolemma of ischemic cardiomyocytes, and antithrombotic action. Biochem Med Metab Biol. 1986 Feb; 35(1): 101–114. https://doi.org/10.1016/0885-4505(86)90064-2. PMID: 3778674</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sharov V.G., Afonskaya N.I., Ruda M.Y., et al. Protection of ischemic myocardium by exogenous phosphocreatine (neoton): pharmacokinetics of phosphocreatine, reduction of infarct size, stabilization of sarcolemma of ischemic cardiomyocytes, and antithrombotic action. Biochem Med Metab Biol. 1986 Feb; 35(1): 101–114. https://doi.org/10.1016/0885-4505(86)90064-2. PMID: 3778674</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang W., Zhang H., Xing Y. Protective effects of phosphocreatine administered post-treatment combined with ischemic postconditioning on rat hearts with myocardial ischemia/reperfusion injury. J Clin Med Res. 2015 Apr; 7(4): 242–247. https://doi.org/10.14740/jocmr2087w. Epub 2015 Feb 9. PMID: 25699120</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang W., Zhang H., Xing Y. Protective effects of phosphocreatine administered post-treatment combined with ischemic postconditioning on rat hearts with myocardial ischemia/reperfusion injury. J Clin Med Res. 2015 Apr; 7(4): 242–247. https://doi.org/10.14740/jocmr2087w. Epub 2015 Feb 9. PMID: 25699120</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Prabhakar G., Vona-Davis L., Murray D., et al. Phosphocreatine restores high-energy phosphates in ischemic myocardium: implication for off-pump cardiac revascularization. J Am Coll Surg. 2003 Nov; 197(5): 786–791. https://doi.org/10.1016/j.jamcollsurg.2003.05.001. PMID: 14585415</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Prabhakar G., Vona-Davis L., Murray D., et al. Phosphocreatine restores high-energy phosphates in ischemic myocardium: implication for off-pump cardiac revascularization. J Am Coll Surg. 2003 Nov; 197(5): 786–791. https://doi.org/10.1016/j.jamcollsurg.2003.05.001. PMID: 14585415</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kim J.S., Jin Y., Lemasters J.J. Reactive oxygen species, but not Ca2+ overloading, trigger pH- and mitochondrial permeability transition-dependent death of adult rat myocytes after ischemiareperfusion. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006 May; 290(5): H2024–2034. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00683.2005. Epub 2006 Jan 6. PMID: 16399872</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kim J.S., Jin Y., Lemasters J.J. Reactive oxygen species, but not Ca2+ overloading, trigger pH- and mitochondrial permeability transition-dependent death of adult rat myocytes after ischemiareperfusion. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006 May; 290(5): H2024–2034. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00683.2005. Epub 2006 Jan 6. PMID: 16399872</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Robinson L.A., Braimbridge M.V., Hearse D.J. Creatine phosphate: an additive myocardial protective and antiarrhythmic agent in cardioplegia. J Thorac Cardiovasc Surg. 1984 Feb; 87(2): 190–200. PMID: 6694410</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Robinson L.A., Braimbridge M.V., Hearse D.J. Creatine phosphate: an additive myocardial protective and antiarrhythmic agent in cardioplegia. J Thorac Cardiovasc Surg. 1984 Feb; 87(2): 190–200. PMID: 6694410</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tokarska-Schlattner M., Epand R.F., Meiler F., et al. Phosphocreatine interacts with phospholipids, affects membrane properties and exerts membrane-protective effects. PLoS One. 2012; 7(8): e43178. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043178. Epub 2012 Aug 17. PMID: 22912820</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tokarska-Schlattner M., Epand R.F., Meiler F., et al. Phosphocreatine interacts with phospholipids, affects membrane properties and exerts membrane-protective effects. PLoS One. 2012; 7(8): e43178. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043178. Epub 2012 Aug 17. PMID: 22912820</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zucchi R., Poddighe R., Limbruno U., et al. Protection of isolated rat heart from oxidative stress by exogenous creatine phosphate. J Mol Cell Cardiol. 1989 Jan; 21(1): 67–73. https://doi.org/10.1016/0022-2828(89)91494-6. PMID: 2716067</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zucchi R., Poddighe R., Limbruno U., et al. Protection of isolated rat heart from oxidative stress by exogenous creatine phosphate. J Mol Cell Cardiol. 1989 Jan; 21(1): 67–73. https://doi.org/10.1016/0022-2828(89)91494-6. PMID: 2716067</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shopit A., Niu M., Wang H., et al. Protection of diabetes-induced kidney injury by phosphocreatine via the regulation of ERK/Nrf2/HO-1 signaling pathway. Life Sci. 2020 Feb 1; 242: 117248. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2019.117248. Epub 2019 Dec 31. PMID: 31899224</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shopit A., Niu M., Wang H., et al. Protection of diabetes-induced kidney injury by phosphocreatine via the regulation of ERK/Nrf2/HO-1 signaling pathway. Life Sci. 2020 Feb 1; 242: 117248. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2019.117248. Epub 2019 Dec 31. PMID: 31899224</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Procházková D., Boušová I., Wilhelmová N. Antioxidant and prooxidant properties of flavonoids. Fitoterapia. 2011 Jun; 82(4): 513–523. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2011.01.018. Epub 2011 Jan 28. PMID: 21277359</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Procházková D., Boušová I., Wilhelmová N. Antioxidant and prooxidant properties of flavonoids. Fitoterapia. 2011 Jun; 82(4): 513–523. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2011.01.018. Epub 2011 Jan 28. PMID: 21277359</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bradic J., Jeremic N., Petkovic A., et al. Cardioprotective effects of Galium verum L. extract against myocardial ischemia-reperfusion injury. Arch Physiol Biochem. 2020 Dec; 126(5): 408–415. https://doi.org/10.1080/13813455.2018.1551904. Epub 2019 Jan 11. PMID: 30632812</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bradic J., Jeremic N., Petkovic A., et al. Cardioprotective effects of Galium verum L. extract against myocardial ischemia-reperfusion injury. Arch Physiol Biochem. 2020 Dec; 126(5): 408–415. https://doi.org/10.1080/13813455.2018.1551904. Epub 2019 Jan 11. PMID: 30632812</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Penna C., Mancardi D., Rastaldo R., Pagliaro P. Cardioprotection: a radical view Free radicals in pre and postconditioning. Biochim Biophys Acta. 2009 Jul; 1787(7): 781–793. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2009.02.008. Epub 2009 Feb 24. PMID: 19248760</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Penna C., Mancardi D., Rastaldo R., Pagliaro P. Cardioprotection: a radical view Free radicals in pre and postconditioning. Biochim Biophys Acta. 2009 Jul; 1787(7): 781–793. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2009.02.008. Epub 2009 Feb 24. PMID: 19248760</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
