ИЗУЧЕНИЕ ЛЕЙШМАНИОЗОВ МЕТОДОМ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
Аннотация
Метод полимеразной цепной реакции широко применяется в изучении различных аспектов лейшманиозов. Для диагностики заболевания, скрининговых исследований и идентификации возбудителя возможно использовать различные биологические материалы. Видовая идентификация лейшманий важна не только для выбора препаратов для лечения, но и для эпидемиологических исследований, чтобы определить меры профилактики.
Об авторе
Е. Н. Жиренкина
Первый Московский государственный медицинского университета им. И.М. Сеченова
Россия
Россия
Екатерина Николаевна Жиренкина, младший научный сотрудник лаборатории эпиднадзора за протозоозами отдела медицинской протозоологии Института медицинской протозоологии и тропической медицины им. Е.И. Марциновского
+7(903)787-76-88
119830, г. Москва, ул. Малая Пироговская, д. 20
Список литературы
1. Булат С.А., Стрелкова М.В., Сысоев В.В. Идентификация маркерных штаммов Leishmania major, L. turanica, L. gerbilli методом полимеразной цепной реакции с универсальным праймером // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. — 1992. — № 1. — С. 21–22.
2. Гончаров Д.Б., Сафьянова В.М., Гибода М. и др. Анализ антигенной структуры мембранного комплекса лейшманий // Мед. паразитология и паразитар. болезни. — 1994. № 1. — С. 3–8.
3. Жиренкина Е.Н., Понировский Е.Н., Стрелкова М.В. и др. Особенности эпидемиологии висцерального лейшманиоза в Папском районе Наманганской области Узбекистана, выявленные при обследовании детей методом ПЦР // Мед. паразитология и паразитар. болезни. — 2011. — № 3. — С. 37–41.
4. Иванова Н.В., Морозов Е.Н., Кукина И.В. и др. Последовательность ITS1, 5.8S и ITS2 рДНК А-типа Plasmodium vivax и разработка метода ретроспективной ПЦР-диагностики малярии по окрашенным препаратам крови «Толстая капля» // Мол. биология. — 2001. — № 35. С. 515–525.
5. Alam V.Z., Kovalenko D.A., Kuhls K. et al. Identification of the agent causing visceral leishmaniasis in Uzbeki and Tajiki foci by analysing parasite DNA extracted from patients' Giemsa-stained tissue preparations // Parasitology. — 2009. — Vol. 136. — P. 981–986.
6. Antinori S., Calattini S., Longhi E. et al. Clinical use of polymerase chain reaction performed on peripheral blood and bone marrow samples for the diagnosis and monitoring of visceral Leishmaniasis in HIV-infected and HIVuninfected patients: A single-center, 8-year experience in Italy and review of the literature // Clinical Infectious Diseases. — 2007. — Vol. 44. — P. 1602–1610.
7. Azizi K., Rassi Y., Javadian E. et al. First detection of Leishmania infantum in Phlebotomus (Larroussius) major (Diptera: Psychodidae) from Iran // J. Med. Entomol. — 2008. — Vol. 45. — P. 726–731.
8. Casolari C., Guaraldi G., Pecorari M. et al. A rare case of localized mucosal leishmaniasis due to Leishmania infantum in an immunocompetent Italian host // Eur. J. Epidemiol. — 2005. — Vol. 6. — Р. 559–561.
9. Davila A.M., Momen H. Internal-transcribed-spacer (ITS) sequences used to explore phylogenetic relationships within Leishmania // Ann. Trop. Med. Parasitol. — 2002. — Vol. 94. — P. 651–654.
10. Deborggraeve S., Claes F., Laurent T. et al. Molecular dipstick test for diagnosis of sleeping sickness // J. Clin. Microbiol. — 2006. — Vol. 44. — P. 2884–2889.
11. Deborggraeve S., Laurent T., Espinosa D. et al. A simplified and standardized polymerase chain reaction format for the diagnosis of Leishmaniasis // The Journal of Infectious Diseases. — 2008. — Vol. 198. — P. 1565–1572.
12. El Tai N.O., Osman O.F., el Fari M. et al. Genetic heterogeneity of ribosomal internal transcribed spacer (its) in clinical samples of Leishmania donovani spotted on filter paper as revealed by single-strand conformation polymorphisms (sscp) and sequencing // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. — 2000. — Vol. 94. — P. 575–579.
13. Gatti S., Gramegna M., Klersy C. et al. Diagnosis of visceral leishmaniasis: The sensitivities and specificities of traditional methods and a nested PCR assay // Ann. Trop. Med. and Parasitol. — 2004. — Vol. 98(7). — P. 667–676.
14. Iniesta L., Fernandez-Barredo S., Bulle B. et al. Diagnostic techniques to detect cryptic leishmaniasis in dogs // Clin. and Diagn. Lab. Immunol. — 2002. — Vol. 9(5). P. 1137–1141.
15. Jaffe C.L., Baneth G., Abdeen Z.A. et al. Leishmaniasis in Israel and the Palestinian Authority // Trends in Parasitology. — 2004. — Vol. 20(7). — P. 328–332.
16. Jamjoom M.B., Ashford R.W., Bates P.A. et al. Towards a standart battery of microsatellite markers for the analysis of the Leishmania donovani complex // Ann. Trop. Med. and Parasitol. — 2002. — Vol. 96(3). — P. 265–270.
17. Kato H., Gomez E.A., Cáceres A.G. et al. Molecular epidemiology for vector research on leishmaniasis // Int. J. Environ. Res. Public Health. — 2010. — Vol. 7. — P. 814–826.
18. Kovalenko D., Razakov Sh., Ponirovsky E. et al. Canine leishmaniosis and its relationship to human visceral leishmaniasis in Eastern Uzbekistan // Parasites&Vectors. — 2011. — Vol. 4. — P. 58–63.
19. Kuhls K., Chicharro C., Cañavate C. et al. Differentiation and gene flow among european populations of Leishmania infantum MON-1 // PLoS. Negl. Trop. Dis. — Vol. 2(7).
20. Le Blancq S.M., Peters W. Leishmania in the Old World: 4. The distribution of L. donovani sensu lato zymodemes // Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. — 1986. — Vol. 80. — P. 367–377.
21. Marfurt J., Nasereddin A., Niederwieser I. et al.Identification and differentiation of Leishmania species in clinical samples by PCR amplification of the miniexon sequence and subsequent restriction fragment length polymorphism analysis // Journal of clinical microbiology. — 2003. — Vol. 41(7). — P. 3147–3153.
22. Moaddeb A., Alborzi A., Behzad-Behbahani A. et al. Early diagnosis of viceral leishmaniais by using polymerase chain reaction method on whole blood. Third World Congress on Leishmaniosis. Palermo-Terrasini Sicily, 2005.
23. Osman O.F., Oakam L., Zij lsta E.E. et al. Evaluation of PCR for diagnosis of visceral leishmaniasis // J. Clin. Microbiol. — 1997. — Vol. 35. — P. 2454–2457.
24. Paradisi M., Grosso M.G., Angelo C. et al. Un caso di leishmaniosi lupoide in eta pediatrica diagnosticata mediante PCR // Minerva pediat. — 2001. — Vol. 53(1). — P. 33–37.
25. Parvizi P.; Mauricio I.; Aransay A.M. et al. First detection of Leishmania major in peridomestic Phlebotomus papatasi from Isfahan province, Iran: comparison of nested PCR of nuclear ITS ribosomal DNA and semi-nested PCR of minicircle kinetoplast DNA // Acta Trop. — 2005. Vol. 93. — P. 75–83.
26. Piarroux R., Gambarelli F., Dumon H. et al. Comparison of PCR with direct examination of bone marrow aspiration, myeloculture and serology for diagnosis of visceral leishmaniasis in immunocompromised patients // Journal of Clinical Microbiology. — 1994. — Vol. 32(3). — P. 746–749.
27. Reale S., Maxia L., Vitale F. et al. Detection of Leishmania infantum in dogs by PCR with lymph node aspirates and blood // J. Clin. Microbiol. — 1999. — Vol. 37. P. 2931–2935.
28. Reithinger R. and Dujardin J.-C. Molecular diagnosis of leishmaniasis: current status and future applications // Journal of Clinical Microbiology. — 2007. — Vol. 45(1). — P. 21–25.
29. Reithinger R., Quinnell R.J., Alexander B. and Davies C.R. Rapid detection of Leishmania infantum infection in dogs: comparative study using an immunochromatographic dipstick test, enzyme-linked immunosorbent assay, and PCR // Journal of Clinical Microbiology. — 2002. — Vol. 40(7). — P. 2352–2356.
30. Reithinger R., Lambson B.E., Barker D.C. et al. Leishmania (Viannia) spp. dissemination and tissue tropism in naturally infected dogs (Canis familiaris) // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. — 2002. Vol. 96. P. 76–78.
31. Rioux J.A., Lanotte G., Serres E. et al. Taxonomy of Leishmania. Use of isoenzymes. Suggestions for a new classification // Ann. Parasitol. Hum. Comp. — 1990. — Vol. 65. — P. 111–125.
32. Rodgers M.R., Stephen J. and Wirth D.F. Amplification and diagnosis of leishmania // Exp. Parasitol. — 1990. — Vol. 71. — P. 267–275.
33. Schonian G., Akuffo H., Lewin S. et al. Genetic variability within the species Leishmania aethiopica does not correlate with clinical variations of cutaneous leishmaniasis // Molecular and Biochemical Parasitology. — 2000. — Vol. 106. — P. 239–248.
34. Schonian G., El Fari M., Lewin S. et al. Molecular epidemiology and population genetic in Leishmania // Med. Microbiol. Immunol. — 2001. — Vol. 190. — P. 61–63.
35. Schönian G., Nasereddin A., Dinse N. et al. PCR diagnosis and characterization of Leishmania in local and imported clinical samples // Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. — 2003. — Vol. 47(1). — P. 349–358.
36. Schonian G., Schnur L., El Fari M. et al. Genetic heterogeneity in the species Leishmania tropica revealed by diff erent PCR-based methods // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. — 2001. — Vol. 195. — P. 217–224.
37. Schonian G., Schweynoch C., Zlateva K. et al. Identification and determination of the relationships of species and strains within the genus Leishmania using single primers in the polymerase chain reaction // Mol. Biochem. Parasitol. — 1996. — Vol. 77. — P. 19–29.
Рецензия
Просмотров:
300
Послать статью по эл. почте 